施一公Science論文印證 | 活細胞定量FRET技術6年前精準預見凋亡機制!
引言:
線粒體外膜通透化(MOMP)是細胞凋亡的“生死開關”,其核心執行者——Bax蛋白的激活與寡聚化機制一直是生命科學領域的焦點。正常情況下,BAX 以單體形式存在于細胞質,C 端 α9 螺旋嵌入 α3-α5 形成的疏水凹槽中;凋亡刺激下,BAX 被 BH3-only 蛋白(如 tBID)激活,轉位至線粒體膜并寡聚化,導致細胞色素 c(Cyt c)等促凋亡因子釋放。
2025年6月26日,施一公院士團隊在Science正刊發表重磅研究,利用單顆粒冷凍電子顯微鏡(cryo-EM)首次解析了激活態BAX寡聚體的高分辨率結構(3.2 ?),揭示了其由二聚體的二聚體構成基本重復單元,并通過α9螺旋“黏性末端”組裝成孔的結構基礎。
該結論與華南師范大學陳同生團隊早在2019年發表于Biochemical and Biophysical Research Communications的研究成果高度一致!更值得驕傲的是,我們采用了更貼近生理環境的活細胞動態監測技術——多高斯FRET分析與延時FRET成像!
一、 兩大研究的核心結論高度一致:Bax寡聚體是觸發MOMP的關鍵。
1. 施一公團隊(Science 2025,冷凍電鏡):
o 核心發現:Bax激活后形成的基本功能單元是由兩個不對稱二聚體組成的“二聚體的二聚體”(a dimer of BAX dimers)。該單元通過α9螺旋“黏性末端”首尾連接形成線性或環形寡聚體,直接破壞線粒體外膜(MOM)(非傳統蛋白孔道)。破壞“BH3-in-groove”界面或α9-α9界面的突變會顯著損害孔形成能力。
o 結論:提出 α9 螺旋作為“黏性末端”驅動寡聚體延伸和環形閉合,解釋了 BAX 形態多樣性的結構基礎。揭示活化的BAX 通過重復單元組裝直接破壞 MOM,高效介導凋亡因子釋放。
o 意義:填補了BAX 寡聚體原子結構的空白,闡明了其模塊化組裝機制和形態靈活性的結構基礎,為理解凋亡通路提供了關鍵框架。

2. 陳同生團隊 (BBRC 2019,FRET):
o 核心發現:首次在天然活細胞中提供直接證據,證明Bax二聚體足以觸發MOMP。 利用創新的多高斯FRET分析(Multi-Gaussian FRET Analysis)結合延時FRET成像(Time-lapse FRET imaging),團隊在單細胞水平實時捕捉到:
§ 線粒體上Bax同源二聚體(表現為~6% FRET效率峰)在MOMP(通過DiIC1(5)膜電位喪失指示)發生前約3分鐘形成。
§ Bax二聚體在MOMP啟動后6分鐘內轉化為四聚體(表現為~11% FRET效率峰),并伴隨MOMP完成(約10分鐘內)。
§ 統計分析顯示,絕大多數細胞的Bax二聚體形成均早于MOMP,而所有細胞的Bax四聚體形成均與MOMP進程同步或在其之后。
o 結論:Bax二聚體(而非必須四聚體)是觸發MOMP的充分條件,其后續寡聚化(如形成四聚體)可能參與孔道的穩定或擴大。
o 意義:解決了關于Bax最小功能單元(二聚體vs四聚體)的爭議,為凋亡早期分子事件提供了動態視角。

二、 核心結論對比與一致性:
特征 | 施一公團隊 (Science 2025) | 陳同生團隊 (BBRC 2019) | 一致性/關聯性 |
核心結論 | Bax激活形成“二聚體的二聚體”作為基本功能單元,其組裝(通過α9)介導MOM破壞。 | Bax二聚體是觸發MOMP的充分條件。 | 高度一致:都確定了二聚體(或由二聚體組成的基本單元)是啟動MOMP的關鍵功能實體。施一公團隊明確了其分子細節,陳同生團隊在活細胞中動態證明了二聚體觸發能力。 |
觸發MOMP的最小單元 | 暗示“二聚體的二聚體”是功能單元。 | 明確證明二聚體足以觸發。 | 互補印證:施一公團隊的結構單元包含二聚體界面,陳同生團隊的活細胞數據直接顯示二聚體在MOMP前形成并具有觸發能力。 |
方法 | 單顆粒冷凍電子顯微鏡 (cryo-EM) | 多高斯FRET分析+延時FRET成像 (Time-lapse FRET) | 互補印證:冷凍電鏡提供高分辨率靜態結構;FRET提供活細胞內實時動態與定量信息。 |
環境 | 體外(純化蛋白、脂質體) | 天然活細胞環境 | 關鍵差異:陳同生團隊在活細胞內進行驗證,更貼近生理的條件。 |
主要優勢 | 原子分辨率結構細節,界面精確描繪。 | 單細胞、實時動態、定量寡聚體狀態、生理環境。 | 各具特色:結構細節vs生理動態。 |
三、 陳同生團隊研究的突出優勢與特色:FRET技術的魅力
施一公團隊的冷凍電鏡工作是結構生物學的里程碑,完美揭示了Bax孔道的組裝藍圖。而本團隊在2019年的研究,則憑借獨特的多高斯FRET分析與活細胞延時成像技術,在時間與生理環境兩個維度上取得了不可替代的突破性發現,其優勢和特色鮮明:
1.生理環境下的動態監測:與冷凍電鏡的體外重構不同,我們的研究在完整的活細胞中進行。這確保了觀測到的Bax激活、轉位、寡聚化及MOMP發生在真實復雜的細胞信號網絡和線粒體環境中,結論更具生理相關性,避免了體外系統可能丟失的調控因素或產生的非生理性寡聚狀態。
2.單細胞分辨率與毫秒級動態: Time-lapse FRET成像允許我們在單個活細胞中連續追蹤Bax的行為。Multi-Gaussian FRET分析則像一把“分子標尺”,精準解析了FRET效率(ED)的分布:
3.揭示關鍵時序關系:得益于高時間分辨率,我們首次精確捕捉到Bax二聚化與MOMP之間的因果時序:二聚體形成早于MOMP(平均提前3分鐘),而四聚體則在MOMP過程中或之后形成(平均在二聚體后6分鐘內)。這直接證明了二聚體是MOMP的觸發者。
四、 FRET技術:洞悉生命動態的前沿之眼
施一公院士團隊的最新成果無疑是結構生物學的杰作,完美印證了我們團隊六年前基于FRET技術得出的科學預言。這不僅是對Bax觸發MOMP分子機制的完美閉環驗證,更是對活細胞定量FRET成像技術強大能力的支持!
這種在天然、動態、定量層面研究蛋白質相互作用的技術平臺,具有極其廣闊的應用前景,可推廣至:
·其他Bcl-2家族蛋白的激活與相互作用研究。
· 受體酪氨酸激酶(RTK)的二聚化/寡聚化信號傳導。
· GPCR激活與信號復合物組裝。
· 任何需要在活細胞中定量、實時監測分子相互作用動態的生物學問題。
結語:
科學探索的征程中,不同技術路徑往往相互印證。施一公團隊冷凍電鏡的“結構之眼”與我們團隊FRET技術的“動態之眼”,共同照亮了Bax觸發凋亡的關鍵瞬間。活細胞定量FRET成像技術在揭示生命過程動態本質方面具有不可替代的強大優勢。未來,我們將繼續深耕和推廣這一技術平臺,致力于在更多生命科學前沿領域做出突破性貢獻。
參考文獻:


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